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新品上市丨還在苦苦思索實驗失敗原因? 這篇IHC秘籍快來收好!

更新時間:2023-08-09  |  點擊率:1171

 






   免疫組織化學(Immunocytochemistry, IHC) 是一門利用抗原與抗體特異性結(jié)合的原理,通過化學反應(yīng)使標記抗體的顯色劑顯色的技術(shù),能夠?qū)M織細胞內(nèi)的抗原進行定位、定性及相對定量檢測,進而深入探究其功能。

IHC實驗步驟繁瑣,包括切片制作(固定,脫水,透明,包埋,切片,貼片,烤片),脫蠟,水化,阻斷,抗原修復(fù),封閉,一抗孵育,二抗孵育,顯色,復(fù)染,封片和分析等,每一個細節(jié)都可能影響到最終的染色結(jié)果。無論是從沒做過IHC的實驗小白,還是想要對當前方法進行優(yōu)化的大牛,這篇秘籍都能讓您有所收獲。——Bioss全新上市的IHC即用型試劑盒,助您一次獲得文獻級的圖像結(jié)果。



切片制作

1.染色結(jié)果不理想,細胞核發(fā)灰模糊,對比不鮮明。
解決方法:①半小時內(nèi)完成取材,組織離體后盡快固定;
②固定液選擇視組織而定,有致密外膜用Carnoy液,活檢用Bouin液,固定液體積要超過組織體積5倍以上,量少應(yīng)中途換液1~3次;

③固定時間在4~24 h之間,長時間固定會影響抗原決定簇的暴露,且容易出現(xiàn)自發(fā)熒光及非特異性染色。

2.蠟塊出現(xiàn)組織收縮凹陷,在抗原修復(fù)時脫片。
解決方法:①梯度酒精脫水盡量充分;
②二甲苯脫蠟時間不宜長,1~3 h最佳,脫蠟過度會導(dǎo)致組織發(fā)硬發(fā)脆;
③浸蠟應(yīng)選擇低熔點的石蠟,并充分浸蠟;

④抗原修復(fù)時,高壓時間過長,應(yīng)適當縮短時間。

3.切片太厚,脫片,影響染色結(jié)果。
解決方法:①切片厚度視組織而定,如同淋巴結(jié)、腎等組織需要比較薄(不超過3 um),腦組織需要較厚(尤其是取新鮮標本冰凍制片時),6-8 um最佳,冰凍可切至10 um;其他一般如胃腸道、肝膽等等組織,2-4 um為宜,太厚易導(dǎo)致細胞重疊,影響觀察;
②切片角度和刀片新舊程度對切片效果的影響較大,切片角度視切片機型號而異,新刀片更易切出完好的切片;
③撈片要求一步到位,輕夾輕放,達到無皺折、無氣泡,水溫控制在40℃左右;
④粘片時玻片可用多聚賴氨酸或蛋白甘油處理,或選擇防脫片,以增強粘附性;

⑤烘干溫度為50℃,時間為12~24 h。

4.染色不均勻。
解決方法:①切片厚度不一致,需更換刀片,調(diào)整切片機狀態(tài);
②試劑配制未混勻,導(dǎo)致局部濃度不一致,應(yīng)將試劑充分混勻后滴加;
③在滴加試劑時讓試劑覆蓋組織;

④脫蠟不全,可更換脫蠟劑或延長脫蠟時間。

5.切片邊緣著色(邊緣效應(yīng))。
解決方法:①組織邊緣與玻片粘貼不牢,邊緣組織松脫漂浮在液體中,每次清洗不易將組織下面試劑洗盡。玻片清洗干凈后應(yīng)用APES或多聚賴氨酸處理,并確保組織切片盡量薄,盡量避免選用壞死較多的組織;

②切片上滴加的試劑未覆蓋均勻或未覆蓋到全部組織,邊緣的試劑少,容易變干,導(dǎo)致邊緣的試劑濃度比中心區(qū)域的高,而使得染色結(jié)果偏深。滴加試劑時要均勻且充分覆蓋到全部組織,為防止邊緣水分減少,滴加試劑時可以適當超出組織邊緣2 mm左右,保證組織部分覆蓋均勻。用組化筆畫圈時,距組織邊緣3-4 mm為宜,避免油劑對實驗結(jié)果的影響。

6.目標蛋白定位異常。
解決方法:①使用新鮮組織切片,
②固定不充分導(dǎo)致組織自溶,損壞,適當延長固定時間;
③根據(jù)組織大小,提高固定劑與組織的比例,切取小組織塊,浸泡固定更加充分;
④固定劑使用不當,根據(jù)目標蛋白和樣品組織性質(zhì)選擇不同固定劑;
⑤優(yōu)化固定條件,包括濃度、溫度、固定時間等;

⑥抗原擴散,嘗試使用交聯(lián)固定劑而不是有機(醇類)固定劑。

7.染色結(jié)果呈弱陽性。

解決方法:①不當?shù)墓潭ǚ绞交蚬潭〞r溫度過高,影響待測抗原的數(shù)量和質(zhì)量,應(yīng)根據(jù)組織選擇更適宜的固定方式及溫度。

8.陽性檢測率及著色強度相對減弱,甚至無染色。
解決方法:①固定液封閉了抗體識別表位,應(yīng)縮短固定時間,增加抗原修復(fù);
②靶蛋白含量低,建議增加抗體使用量或利用放大步驟來放大信號;
③靶蛋白為膜蛋白而表位可能因為滲透作用被破壞或移除,建議將緩沖液中的滲透試劑減少或移除。
④組織較厚,建議做細胞破膜,以便抗體順利進入胞內(nèi)與相應(yīng)抗原結(jié)合。

抗原修復(fù)

1. 陽性檢測率及著色強度相對減弱,甚至無染色。
解決方法:①抗原修復(fù)緩沖液有多種,常用的有檸檬酸鹽緩沖液(pH 6.0),EDTA緩沖液(pH 8.0-9.0),Tris / Tris-EDTA緩沖液(pH 9.0-10.0),和胰酶(pH 3.5±0.2),修復(fù)液的PH值對染色結(jié)果的影響比較大,具體選擇應(yīng)視情況而定;
②抗原修復(fù)不足,由于固定步驟引起的蛋白交聯(lián)導(dǎo)致抗原仍未被修復(fù)會導(dǎo)致染色減弱,需使用正確的抗原修復(fù)方法,如微波熱修復(fù)及高壓熱修復(fù)等;
③迅速冷卻,加熱結(jié)束后迅速用冷水澆淋使修復(fù)液急速降溫,可能造成抗原暴露不充分,且降溫太快,組織和載玻片的收縮系數(shù)不同易使組織脫片,應(yīng)采用平緩冷卻,即讓修復(fù)液溫度平緩下降的方式。
2.背景染色較深。
解決方法:①固定過度,需摸索修復(fù)條件,改變抗原修復(fù)方法或減小抗原修復(fù)強度;
②抗原修復(fù)過程中,切片干涸。修復(fù)液溢出后未及時補充液體、染色切片太多、動作太慢、忘記滴液、滴液流失等都是造成組織變干的原因。解決的辦法是操作要認真仔細,采用DAKO筆或PAP Pen在組織周圍畫圈,可以有效的避免液體流失,提高操作速度;

③避免切片在緩沖液或修復(fù)液中浸泡時間過長(大于 24 h)。

3.結(jié)果出現(xiàn)弱陽。

解決方法:①不適當?shù)目乖迯?fù)方式,導(dǎo)致抗原決定簇暴露不足,需摸索修復(fù)條件,改變抗原修復(fù)方法。

4.目標蛋白定位異常。
解決方法:①抗原修復(fù)過強,導(dǎo)致組織結(jié)構(gòu)被破壞,蛋白轉(zhuǎn)移。應(yīng)優(yōu)化抗原修復(fù)程序或嘗試不同的抗原修復(fù)方法,注意保留組織完整形態(tài)。

新品上市

熱銷產(chǎn)品

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