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Bioss WB超級(jí)專題月 | WB實(shí)驗(yàn)流程避坑指南

更新時(shí)間:2026-05-27  |  點(diǎn)擊率:138

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01

樣品制備


1.蛋白提?。?/strong>

  • 裂解要快速,先變性后保存,在不影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)的情況下盡量選擇較強(qiáng)的裂解液。

  • 裂解液選擇:

表格圖片_Sheet1.png
  • 蛋白提取要在低溫條件下進(jìn)行,防止蛋白自溶或降解,同時(shí)可以加入適當(dāng)?shù)牡鞍酌敢种苿┮詼p少蛋白酶的水解作用。

  • 磷酸化蛋白提取還需加入蛋白磷酸酶抑制劑,以防止蛋白去磷酸化。

2.需對(duì)蛋白進(jìn)行定量,確定合適的上樣量,常用的為BCA法。

3.蛋白變性:

表格圖片_Sheet2.png


02

SDS-PAGE電泳



1.根據(jù)蛋白分子量的大小選擇合適的膠濃度,蛋白分子量小應(yīng)選擇高濃度的膠,蛋白分子量大則選擇低濃度的膠。

2.凝膠選擇:

上部為5%濃縮膠,下部為不同濃度的分離膠,根據(jù)不同蛋白分子量選擇分離膠濃度。

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3.凝膠配置:

  • TEMED和APS促進(jìn)凝膠反應(yīng),需現(xiàn)用現(xiàn)加,一般先加TEMED,后加APS。

  • 常溫下0.5h膠可凝固,若天氣寒冷或需加快凝固,可將其置于37℃孵箱中加速凝固。

  • 膠最好現(xiàn)配現(xiàn)用,如果需要短暫保存,要用濕潤的保鮮膜包好并置于4℃冰箱中。

  • 丙烯酰胺有神經(jīng)毒性,配膠時(shí)需要戴手套操作。

4.緩沖液:

  • 內(nèi)槽電泳緩沖液要現(xiàn)配現(xiàn)用。

  • 根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求,選擇變性/非變性的上樣緩沖液。

  • 根據(jù)蛋白分子量選擇合適的預(yù)染Marker。

5.上樣:

  • 上樣前可以適當(dāng)離心去除氣泡。

  • 上樣過程中,避免引入氣泡,以防上樣不均勻。

  • 樣品不要溢出樣本孔。

  • 吸頭不要觸及樣本孔底部,否則條帶會(huì)變形。

  • 每個(gè)樣本孔加入15-40μg蛋白,樣品為純化蛋白時(shí),可能需要減少上樣量。

6.跑膠:

  • 濃縮膠電壓一般采用100V左右,待溴酚藍(lán)遷移出濃縮膠后再換為200V。

  • 按照儀器制造商推薦的時(shí)間跑膠,不同機(jī)器的跑膠時(shí)間不同,具體取決于電壓。

  • 不要保存凝膠,應(yīng)立刻進(jìn)行轉(zhuǎn)膜。


03

轉(zhuǎn)膜



1.轉(zhuǎn)膜方式選擇

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2.膜可能會(huì)產(chǎn)生自發(fā)熒光導(dǎo)致高背景,相較傳統(tǒng)的PVDF膜,硝酸纖維素膜(NC膜)的背景低。

3.膠在負(fù)極,膜靠近正極,為防止短路,確保將濾紙和膜的大小剪裁得與凝膠一致,濾紙不要大過膜。

4.為避免手指接觸膜影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果,操作應(yīng)使用鑷子,并僅接觸膜的邊緣。

5.膜上可以剪一個(gè)小角用來標(biāo)記正反面。

6.轉(zhuǎn)膜緩沖液:

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7.轉(zhuǎn)膜緩沖液要提前冷卻,且膠要在轉(zhuǎn)膜緩沖液里平衡一下,防止膠變形,同時(shí)有助于去除影響轉(zhuǎn)膜的雜質(zhì)。

8.夾好膜和凝膠后,要確保凝膠、膜和濾紙之間無氣泡。

9.轉(zhuǎn)膜儀生產(chǎn)商一般會(huì)在自己的網(wǎng)站上提供詳細(xì)的轉(zhuǎn)膜流程。根據(jù)系統(tǒng)不同,具體轉(zhuǎn)膜流程會(huì)有所不同。

10.濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)膜的電流一般在200-400mA之間,轉(zhuǎn)膜時(shí)間為30-60min,也可以在15-20mA轉(zhuǎn)膜過夜。具體的轉(zhuǎn)膜時(shí)間要根據(jù)蛋白的分子量大小而定,目的蛋白的分子量越大,需要的轉(zhuǎn)膜時(shí)間越長,分子量越小則需要的轉(zhuǎn)膜時(shí)間越短。

11.可使用麗春紅染色液初步檢測轉(zhuǎn)膜效率,它與下游WB檢測兼容,無任何干擾。染色后可以用蒸餾水,PBS或者其他溶液洗去??捎糜赑VDF膜、硝酸纖維素膜(NC膜)和醋酸纖維素膜上蛋白的檢測,不適用于尼龍膜上的蛋白檢測。


04

免疫印跡



1.封閉液的選擇:

  • 常見的封閉液有5%脫脂奶粉和BSA封閉液。

  • 脫脂奶粉不能與生物素化或伴刀豆蛋白標(biāo)記的抗體一起使用。

  • 脫脂奶粉不能用于堿性磷酸酶(AP)顯色萬法。

  • 脫脂奶粉盡量不用于磷酸化抗體對(duì)蛋白磷酸化的檢測。

2.封閉時(shí)間和封閉液劑量要足夠,封閉不充分顯色背景會(huì)過深。

3.洗膜時(shí)間要適當(dāng),洗膜時(shí)液體的體積大約需要15mL左右,需要晃動(dòng)洗膜,一般用TBST洗滌5min×3次。洗膜次數(shù)可根據(jù)實(shí)際情況添加或減少,過度洗膜會(huì)使信號(hào)減弱。

4.一抗的稀釋液可根據(jù)實(shí)際情況確定,可用5%脫脂奶粉稀釋,也可直接用1×TBST稀釋。

5.抗體的稀釋倍數(shù)按照產(chǎn)品說明書和實(shí)驗(yàn)要求進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整,抗體濃度不宜過高,適宜的一抗和二抗?jié)舛瓤梢蕴岣咝旁氡取?/span>

6.如果使用的是熒光二抗,在加入其之后的步驟需要避光操作。

7.疊氮鈉對(duì)HRP有抑制性,使用HRP為標(biāo)記二抗時(shí),緩沖液中不能使用疊氮鈉作為防腐劑。

8.常見顯影方法:

表格圖片_Sheet6.png

9.使用HRP-ECL發(fā)光法時(shí),A、B發(fā)光液按比例稀釋混合,現(xiàn)配現(xiàn)用。

10.不同蛋白最佳曝光時(shí)間不同,如果同一張膜上不同樣品信號(hào)差異太大,可以嘗試將膜剪開再分別進(jìn)行曝光。



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